Latin American & Caribbean Aquaculture 2024

September 24 - 27, 2024

Medellín, Colombia

CARACTERIZACIÓN DE CEPAS AISLADAS DEL HEPATOPÁNCREAS DE CAMARÓN Y SU RESISTENCIA A DIFERENTES PRODUCTOS TERAPÉUTICOS

*Mendoza S.1,2,, Cristel Zambrano .2,

Universidad Estatal Península de Santa Elena

e-mail: 1 sonnya.mendoza@gmail.com

2smendoza@upse.edu.ec

 



La creciente resistencia bacteriana a productos terapéuticos en la industria camaronera representa un gran desafío, dando lugar a cepas multirresistentes que amenazan la sostenibilidad de la producción. Ante este escenario, se vuelve crucial implementar estrictas medidas de bioseguridad y desarrollar estrategias de uso racional de antimicrobianos, buscando un equilibrio entre el control de enfermedades y la preservación de los sistemas naturales. Por lo que, los objetivos de esta investigación fueron: 1) Verificar la resistencia a los antibióticos para erradicar su uso en producción, además de medir la respuesta de las bacterias ante posibles nuevas enfermedades como la AHPND; 2) Determinar si existe resistencia a antibióticos de uso humano que impacte las comunidades bacterianas en cultivos y afluentes naturales; 3) Desarrollar estrategias de manejo más amigables que erradiquen totalmente el uso de antibióticos.

En esta investigación se recolectaron  80  muestras de camarones de cultivos de diferentes zonas de cultivos de producción en Ecuador, como Yaguachi,Santa Elena, El Morro, Sabana grande, Taura, trabajándose con aislamientos y siembras del hepatopáncreas en agares para Vibrios (TCBS)/ Cromoagar, Cetrimide y agar universal (TSA), incluyendo modificación de sal, de acuerdo a la zona de cultivo.Los análisis microbiológicos permitieron conocer las ufc.ml (FDA.1998), aislandose del hepatopáncreas del camarón 129 cepas de bacterias relacionadas con mortalidades. Estas cepas fueron caracterizadas fenotípica y bioquímicamente donde se identificaron del agar TCBS, Vibrio alginolyticus (43%), Vibrio parahaemolyticus (35%), Pseudomona aeruginasa (9%) Aeromona hydrophila (9%) y Shewanella putrefaciens (4%). Por otro lado, en el agar CHROMO agar, se identificaron Vibrio alginolyticus (41%), Vibrio vulnificus (37%) y Vibrio parahaemolyticus (22%).

Doce fueron los antibióticos empleados para la medición de la resistencia de las bacterias aisladas,1.Amoxycilina [30µg], 2.Cloranphenicol [10µg], 3.Enrofloxacina [5µg], 4.Gentamicina [10µg], 5.Lincomycina [10µg],, 6.Ácido nalidíxico [30µg], 7.Nitrofurantoína [30µg],, 8.Norflorxacina [30µg], 9.Streptomicina [10µg], 10.Sulphamethoxazole [30µg], 11.Tetraciclina[10µg],  12.Vancomycina [10µg].La sensibilidad antimicrobiana se midió utilizando el método de Bauer et al., (1962), recomendado por el National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS), estableciendose como susceptible  los halos (≥30 mm), intermedio halos de (14 – 59 mm) y resistente halos (≤10 mm), según lo establecido por Taroco et al., (2006). Los resultados presentaron halos de inhibición menores a 10 mm.  con una alta resistencia para determinadas cepas y antibióticos analizados, en especial para la Lincomycina, Ácido nalidíxico y Vancomycina, cuyo halo de inhibición fue nulo con 0 mm.,en la inhibción del crecimiento bacteriano de las cepas